Ustroj i pravila rada u bakteriološkom laboratoriju. Bakteriološki laboratorij: poseban namještaj, odjeća i posuđe Koji odjeli postoje u bakteriološkom laboratoriju

Uvod

Kao opći dio svake druge znanosti, opća se bakteriologija ne bavi posebnim pitanjima (recimo, identifikacijom pojedinih vrsta bakterija), nego problemima općenito; njegova metodologija pokriva osnovne postupke koji se široko koriste u velikom broju laboratorijskih studija. Ovo nastavno pomagalo nije usmjereno na identifikaciju bilo koje skupine mikroorganizama. To je zadatak sljedećih publikacija - o privatnoj i sanitarnoj mikrobiologiji. Međutim, ovdje predstavljene metode mogu biti korisne u bilo kojem području gdje su uključene bakterije i mogu se primijeniti na praktične probleme koji uključuju izolaciju i tipizaciju bakterija.

Bakteriologija je postala znanost tek nakon što su razvijene jedinstvene tehnike pomoću kojih nastavlja utjecati i prodirati u kasnija znanstvena područja kao što su virologija, imunologija i molekularna biologija. Tehnika korištenja čistih kultura koju je razvio R. Koch te imunološke reakcije i kemijske analize koje je prvi upotrijebio L. Pasteur nisu izgubile na značaju.

Metodologija opće bakteriologije odražava se u ovoj publikaciji korištenjem strukture koja je tipična za standardne udžbenike u ovoj disciplini. Međutim, za razliku od laboratorijskih radionica na kolegiju mikrobiologije za sveučilišta, on je detaljnije predstavljen u nekim dijelovima i služi samo kao referenca. Ova struktura uzima u obzir specifično obrazovanje i specijalizaciju bakteriologa i veterinarskih stručnjaka. Često se gradivo iznosi proizvoljno, pa se neke metode spominju više puta, zbog želje da se pokaže njihova međusobna povezanost.

Bakteriološki laboratorij

Bakteriološki laboratoriji kao ustrojstvene jedinice organiziraju se u sastavu područnih, područnih, međupodručnih veterinarskih laboratorija, kao iu sastavu područnih veterinarskih laboratorija. Također su organizirani u centrima sanitarnog i epidemiološkog nadzora, u bolnicama za zarazne bolesti, općim bolnicama, nekim specijaliziranim bolnicama (na primjer, u tuberkuloznim, reumatološkim, dermatovenerološkim) iu poliklinikama. Bakteriološki laboratoriji dio su specijaliziranih istraživačkih ustanova. Bakteriološki laboratoriji stalno se koriste za potvrđivanje ili utvrđivanje ocjene prikladnosti mesa za prehrambene svrhe prema VSE.

Predmeti istraživanja u bakteriološkim laboratorijima su:

1. Izlučevine iz tijela: urin, feces, sputum, gnoj, kao i krv, patološki i kadaverični materijal.

2. Objekti vanjske okoline: voda, zrak, tlo, ispiranje iz opreme, hrana za životinje, tehnološke sirovine dobivene klanjem domaćih životinja.

3. Prehrambeni proizvodi, uzorci mesa i mesnih prerađevina, mlijeka i mliječnih proizvoda za koje je potrebno izvršiti ocjenu prikladnosti za prehrambene svrhe.

Prostorije bakteriološkog laboratorija i oprema radnog mjesta

Specifičnosti mikrobiološkog rada zahtijevaju da prostorija namijenjena laboratoriju bude izolirana od dnevnih soba, prehrambenih jedinica i drugih neosnovnih proizvodnih prostora.

Bakteriološki laboratorij obuhvaća: laboratorijske prostorije za bakteriološka istraživanja i pomoćne prostorije; autoklav ili sterilizacija za dezinfekciju otpadnog materijala i kontaminiranog pribora; praonica opremljena za pranje suđa; bakteriološka kuhinja – za pripremu, punjenje, sterilizaciju i čuvanje hranjivih podloga; vivarij za držanje pokusnih životinja; materijal za skladištenje rezervnih reagensa, posuđa, opreme i kućanske opreme.

Navedene pomoćne prostorije, kao samostalne građevinske cjeline, dio su velikih bakterioloških laboratorija. U malim laboratorijima bakteriološka kuhinja i kuhinja za sterilizaciju spojene su u jednu prostoriju; Ne postoji posebna prostorija za držanje pokusnih životinja.

Prostorije mikrobioloških laboratorija podijeljene su u 2 zone prema stupnju opasnosti za osoblje:

I. “Zarazna” zona - prostorija ili skupina laboratorijskih prostorija u kojima se manipulira i skladišti patogene biološke agense, osoblje je odjeveno u odgovarajuću vrstu zaštitne odjeće.

II. "Čista" zona - prostorije u kojima se ne radi s biološkim materijalom, osoblje je odjeveno u osobnu odjeću.

Najsvjetlije, najprostranije prostorije raspoređene su za laboratorijske prostorije u kojima se provode sve bakteriološke studije. Zidovi u ovim prostorijama do visine od 170 cm od poda obojeni su u svijetle boje uljanom bojom ili obloženi pločicama. Pod je prekriven relinom ili linoleumom. Ova vrsta završne obrade omogućuje vam korištenje otopina za dezinfekciju prilikom čišćenja prostorije.

Svaka prostorija treba imati umivaonik s tekućom vodom i policu za bocu dezinfekcijske otopine.

Jedna od prostorija opremljena je staklenom kutijom - izoliranom prostorijom s predprostorom (predboksom) za izvođenje radova u aseptičnim uvjetima. U boks se postavljaju stol za sjetvu i stolica, a iznad radnog mjesta montiraju se baktericidne lampe. U pretprostoru je smješten ormar za čuvanje sterilnog materijala. Prozori i vrata prostorija u "zaraznoj" zoni moraju biti zapečaćeni. Postojeća ispušna ventilacija iz "zarazne" zone mora biti izolirana od ostalih ventilacijskih sustava i opremljena finim zračnim filtrima.

Laboratorij je opremljen laboratorijskim stolovima, ormarima i policama za odlaganje opreme, posuđa, boja i reagensa potrebnih za rad.

Za rad bakteriologa i laboranta vrlo je važna pravilna organizacija radnog mjesta. Laboratorijski stolovi postavljeni su u blizini prozora. Prilikom postavljanja treba nastojati osigurati da svjetlost pada ispred ili sa strane osobe koja radi, po mogućnosti s lijeve strane, ali nikako odostraga. Preporučljivo je da prostorije za analizu, posebno za mikroskopiranje, imaju prozore orijentirane prema sjeveru ili sjeverozapadu, jer je za rad potrebno ravnomjerno, difuzno svjetlo. Površinska osvijetljenost stolova za rad treba biti 500 luksa. Radi lakše dezinfekcije površina laboratorijskih stolova prekrivena je plastikom ili presvučena željezom. Svaki zaposlenik laboratorija ima zasebno radno mjesto dimenzija 150 x 60 cm.

Sva radna mjesta opremljena su predmetima potrebnim za svakodnevni bakteriološki rad čiji je popis dat u tablici 1.

Stol 1.

Potrebni predmeti za bakteriološki rad

Dezinfekcija

Dezinfekcija je uništavanje mikroorganizama u objektima okoliša.

U mikrobiološkim laboratorijima mjere dezinfekcije koriste se vrlo široko. Po završetku rada sa zaraznim materijalom djelatnici bakterioloških laboratorija provode preventivnu dezinfekciju ruku i radnog mjesta.

Istrošeni patološki materijal (feces, urin, sputum, razne vrste tekućina, krv) dezinficira se prije bacanja u kanalizaciju.

Graduirane i Pasteurove pipete, staklene lopatice i metalni instrumenti kontaminirani patološkim materijalom ili kulturom mikroba odmah nakon upotrebe spuštaju se u staklene posude s otopinom za dezinfekciju koje se nalaze na stolu na svakom radnom mjestu.

Predmetna i pokrovna stakla koja se koriste u radu također podliježu obveznoj dezinfekciji, jer čak i fiksirani i obojeni razmaz ponekad zadržava vitalne mikroorganizme koji mogu biti izvor intralaboratorijske kontaminacije. Dezinficijensima se ne tretira samo ono posuđe u kojem su se uzgajali mikroorganizmi. Stavlja se u metalne spremnike ili kante, zatvara i šalje na autoklaviranje.

Izbor dezinficijensa, koncentracija njegove otopine, omjer između količine dezinficijensa i materijala koji se dezinficira, kao i trajanje dezinficijensa određuju se ovisno o konkretnim uvjetima, vodeći računa prije svega o stabilnosti dezinficiranih mikroba, stupanj očekivane kontaminacije, sastav i konzistenciju materijala u kojem se nalaze.

Dezinfekcija ruku nakon rada sa zaraznim materijalom iu dodiru s kožom. Po završetku rada sa zaraznim materijalom, ruke se profilaktički dezinficiraju. Vata ili gazni ubrus se navlaži 1% otopinom kloramina, prvo se obriše lijeva, a zatim desna ruka u sljedećem redoslijedu: stražnja strana ruke, površina dlana, interdigitalni prostori, kreveti za nokte. Dakle, najprije se tretiraju najmanje onečišćena područja, a zatim se prelazi na najjače onečišćena područja kože. Brišite ruke 2 minute s dva uzastopna tampona. Kada se ruke kontaminiraju kulturom patogenog mikroba ili patološkim materijalom, najprije se dezinficiraju kontaminirana područja kože. U tu svrhu pokriju se 3-5 minuta vatom navlaženom 1% otopinom kloramina, zatim se vata baci u spremnik ili kantu s otpadnim materijalom, a ruke se tretiraju drugim tupferom u istoj. način kao tijekom preventivne dezinfekcije. Nakon tretmana kloraminom, operite ruke toplom vodom i sapunom. Kod rada s bakterijama koje stvaraju spore, tretman ruku se provodi s 1% aktiviranim kloraminom. Ako zarazni materijal dođe u dodir s rukama, izloženost dezinficijensu se povećava na 5 minuta.

Sterilizacija

Sterilizacija, za razliku od dezinfekcije, podrazumijeva uništavanje svih vegetativnih i sporonosnih, patogenih i nepatogenih mikroorganizama u predmetu koji se sterilizira. Sterilizacija se provodi na različite načine: parom, suhim vrućim zrakom, kuhanjem, filtracijom itd. Izbor jedne ili druge metode sterilizacije određen je kvalitetom i svojstvima mikroflore predmeta koji se sterilizira.

Priprema i sterilizacija laboratorijske opreme

Prije sterilizacije laboratorijsko stakleno posuđe se opere i osuši. Epruvete, bočice, boce, madraci i boce zatvaraju se čepovima od pamučne gaze. Stavite papirnate čepove preko čepova na svaku posudu (osim epruveta).

Gumeni, pluteni i stakleni čepovi steriliziraju se u posebnoj vrećici zavezanoj za grlo posude. Petrijeve zdjelice se steriliziraju zamotane u papir, po 1-10 komada. Pasterove pipete 3-15 kom. zamotan u omotni papir. Na vrh svake pipete stavlja se komadić vate kako bi se spriječio ulazak materijala u okoliš. Prilikom omatanja pipeta treba paziti da se ne polome začepljeni krajevi kapilara. Tijekom rada, pipete se vade iz vrećice za gornji kraj.

U gornji dio graduiranih pipeta, kao kod Pasteurovih pipeta, umetne se sigurnosna vata, a zatim se zamota u debeli papir, prethodno izrezan na trake širine 2-2,5 cm i duljine 50-70 cm. Traka se stavi na stol, lijevi kraj je presavijen i omotan vrhom pipete, a zatim, okrećući pipetu, omotajte traku papira na nju. Da se papir ne bi rasklopio, suprotni kraj je uvrnut ili zalijepljen. Na papiru je napisan volumen umotane pipete. Ako postoje pernice, u njima se steriliziraju graduirane pipete.

Laboratorijsko stakleno posuđe se sterilizira:

a) suha toplina na temperaturi od 180°C, odnosno 160°C, 1 sat i 150 minuta.

b) u autoklavu pod pritiskom od 1,5 atm. 60 minuta, za uništavanje mikroflore spora - 90 minuta na 2 atm.

Sterilizacija štrcaljki. Šprice se steriliziraju u rastavljenom obliku: odvojeno cilindar i klip u 2% otopini natrijevog bikarbonata 30 minuta. Pri radu s mikroflorom koja nosi spore, sterilizacija se provodi u autoklavu na 132±2°C (2 atm.) 20 minuta, na 126±2°C (1,5 atm.) - 30 minuta. Sterilizirana štrcaljka se sastavlja nakon što se ohladi, klip se umetne u cilindar, stavi se igla, nakon što se prethodno izvadi trn s nje. Igla, cilindar i klip se uzimaju pincetom, koja se sterilizira zajedno sa štrcaljkom.

Sterilizacija metalnih instrumenata. Metalni instrumenti (škare, skalpeli, pincete i dr.) sterilizirani su u 2% otopini natrijevog bikarbonata, čime se sprječava hrđanje i gubitak oštrine. Preporuča se oštrice skalpela i škara omotati vatom prije uranjanja u otopinu.

Sterilizacija bakterijskih petlji. Bakterijske petlje od platinske ili nikromske žice steriliziraju se u plamenu alkoholnog ili plinskog plamenika. Ova metoda sterilizacije naziva se kalcinacija ili flambiranje.

Petlja se postavlja u vodoravni položaj u donjem, najhladnijem dijelu plamena plamenika kako bi se spriječilo prskanje spaljenog patogenog materijala. Nakon što izgori, petlja se pomakne u okomiti položaj, prvo donji, zatim gornji dio žice se užari i progori držač petlje. Kalcinacija općenito traje 5-7 sekundi.

Priprema za sterilizaciju i sterilizacija papira, gaze i vate. Vata, gaza, filter papir steriliziraju se u sušioniku na temperaturi od 160°C u roku od sat vremena od trenutka kada termometar očita tu temperaturu ili u autoklavu na tlaku od 1 atm. unutar 30 minuta.

Prije sterilizacije papir i gaza se izrežu na komade, a vata se uvalja u kuglice ili tampone potrebne veličine. Nakon toga se svaka vrsta materijala posebno, jedan ili više komada, zamota u debeli papir. Ako pakiranje pukne, sterilizirani materijal treba ponovno sterilizirati jer je narušena njegova sterilnost.

Sterilizacija rukavica i ostalih proizvoda od gume. Gumeni proizvodi (rukavice, cijevi i sl.) kontaminirani vegetativnim oblikom mikroba steriliziraju se kuhanjem u 2% otopini natrijevog bikarbonata ili puštanjem vodene pare 30 minuta; kada je kontaminirana mikroflorom koja nosi spore, u autoklavu pod tlakom od 1,5-2 atm. 30 ili 20 minuta. Prije sterilizacije, gumene rukavice se iznutra i izvana posipaju talkom da se ne zalijepe. Između rukavica stavlja se gaza. Svaki par rukavica posebno se zamota u gazu iu tom obliku se stavlja u kutije.

Sterilizacija kultura patogenih mikroba. Epruvete i čašice s mikrobnim kulturama koje nisu potrebne za daljnji rad stavljaju se u metalni spremnik, zatvara se poklopac i šalje na sterilizaciju. Kulture patogenih mikroba, vegetativnih oblika, ubijaju se u autoklavu 30 minuta pri tlaku od 1 atm. Isporuku spremnika za sterilizaciju u autoklav vrši posebno određena osoba uz potpis. Režim sterilizacije bilježi se u posebnom dnevniku. Prilikom uništavanja kultura mikroba I. i II. skupine patogenosti, kao i materijala kontaminiranog ili sumnjivog na kontaminaciju uzročnicima iz tih skupina, spremnici s otpadnim materijalom prenose se na metalne posude s visokim stranicama u prisutnosti osobe u pratnji ovlaštene za rad sa zaraznim materijalom.

Vrste sterilizacije

Sterilizacija kuhanjem. Sterilizacija prokuhavanjem provodi se u sterilizatoru. U sterilizator se ulijeva destilirana voda jer voda iz slavine stvara kamenac. (Stakleni predmeti potapaju se u hladnu vodu, metalni u vruću vodu uz dodatak natrijevog bikarbonata). Predmeti koji se steriliziraju kuhaju se na laganoj vatri 30-60 minuta. Početkom sterilizacije smatra se trenutak kada voda zavrije u sterilizatoru. Na kraju kuhanja sterilnom pincetom uzimaju se instrumenti koji se kuhaju zajedno s ostalim predmetima.

Sterilizacija suhom toplinom. Sterilizacija suhom toplinom provodi se u Pasteur-ovoj peći. Materijal pripremljen za sterilizaciju stavlja se na police tako da ne dolazi u dodir sa stjenkama. Kabinet se zatvori i zatim se uključi grijanje. Trajanje sterilizacije na temperaturi od 150°C je 2 sata, na 165°C - 1 sat, na 180°C - 40 minuta, na 200°C - 10-15 minuta (na 170°C se papir i vata okreću). žuti, a na višim temperaturama pougljeni). Početkom sterilizacije smatra se trenutak kada temperatura u pećnici dosegne željenu visinu. Na kraju perioda sterilizacije, pećnica se isključuje, ali se vrata ormarića ne otvaraju dok se potpuno ne ohlade, jer hladan zrak koji ulazi u ormarić može uzrokovati stvaranje pukotina na vrućem posuđu.

Sterilizacija parom pod pritiskom. Sterilizacija parom pod tlakom provodi se u autoklavu. Autoklav se sastoji od dva kotla umetnuta jedan u drugi, kućišta i poklopca. Vanjski kotao naziva se vodeno-parna komora, unutarnji kotao naziva se sterilizacijska komora. Para se stvara u vodoparnom kotlu. Materijal koji se sterilizira stavlja se u unutarnji kotao. Na vrhu kotla za sterilizaciju postoje male rupice kroz koje prolazi para iz vodeno-parne komore. Poklopac autoklava je hermetički pričvršćen na kućište. Osim navedenih glavnih dijelova, autoklav ima niz dijelova koji reguliraju njegov rad: manometar, vodomjerno staklo, sigurnosni ventil, odvodni, zračni i kondenzacijski ventil. Manometar se koristi za određivanje tlaka koji se stvara u sterilizacijskoj komori. Normalni atmosferski tlak (760 mm Hg) uzima se kao nula, stoga je u autoklavu u stanju mirovanja igla manometra na nuli. Postoji određeni odnos između očitanja manometra i temperature (Tablica 2).

Tablica 2.

Odnos između očitanja manometra i temperature vrenja vode

Crvena crta na skali manometra određuje maksimalni dopušteni radni tlak u autoklavu. Sigurnosni ventil služi za zaštitu od prekomjernog porasta tlaka. Postavljen je na zadani tlak, odnosno tlak na kojem se mora izvršiti sterilizacija, a kada igla manometra prijeđe crtu, ventil autoklava se automatski otvara i ispušta višak pare, čime se usporava daljnji porast tlaka.

Na bočnoj stijenci autoklava nalazi se vodomjerno staklo koje pokazuje razinu vode u kotlu za vodu i paru. Na staklenoj cijevi vodomjera postoje dvije vodoravne crte - donja i gornja, koje označavaju dopuštenu donju, odnosno gornju razinu vode u parnoj komori. Zračni ventil je dizajniran za uklanjanje zraka iz sterilizacijske i vodeno-parne komore na početku sterilizacije, jer zrak, kao loš vodič topline, remeti režim sterilizacije. Na dnu autoklava nalazi se slavina za kondenzaciju koja oslobađa sterilizacijsku komoru od kondenzata koji nastaje tijekom perioda zagrijavanja steriliziranog materijala.

Pravila za rad s autoklavom. Prije početka rada pregledajte autoklav i kontrolnu opremu. U autoklavima s automatskom regulacijom pare, strelice na električnom vakuumometru vodeno-parne komore postavljene su u skladu s načinom sterilizacije: donja strelica je postavljena na 0,1 atm. donji, gornji - za 0,1 atm. iznad radnog tlaka, vodeno-parna komora se napuni vodom do gornje oznake mjernog stakla. Za vrijeme punjenja vodom, ventil na cijevi kroz koju para ulazi u komoru je otvoren kako bi se omogućio slobodan izlazak zraka iz kotla. Komora za sterilizaciju autoklava je napunjena materijalom koji se sterilizira. Nakon toga, poklopac (ili vrata) autoklava je zatvoren, čvrsto pričvršćen središnjom bravom ili zasunima; da biste izbjegli izobličenje, vijke zavrnite unakrsno (duž promjera). Zatim uključite izvor grijanja (električna struja, para), zatvorite ventil na cijevi koja povezuje izvor pare s komorom za sterilizaciju. S početkom stvaranja pare i stvaranjem tlaka u vodeno-parnoj komori provodi se pročišćavanje (uklanjanje zraka iz kotla za sterilizaciju). Način uklanjanja zraka određen je dizajnom autoklava. Isprva zrak izlazi u odvojenim dijelovima, zatim se pojavljuje glatki, kontinuirani mlaz pare, što ukazuje da je zrak potpuno istisnut iz sterilizacijske komore. Nakon uklanjanja zraka, slavina se zatvara, au sterilizacijskoj komori počinje postupno povećanje tlaka.

Početkom sterilizacije smatra se trenutak kada igla manometra pokaže namješteni tlak. Nakon toga se smanjuje intenzitet zagrijavanja kako bi tlak u autoklavu ostao na istoj razini potrebno vrijeme. Na kraju vremena sterilizacije zagrijavanje se zaustavlja. Zatvorite ventil u cjevovodu koji dovodi paru u komoru za sterilizaciju i otvorite ventil na kondenzacijskoj (donjoj) cijevi kako biste smanjili tlak pare u komori. Nakon što igla manometra padne na nulu, polako olabavite stezne uređaje i otvorite poklopac autoklava.

Temperatura i trajanje sterilizacije određeni su kvalitetom materijala koji se sterilizira i svojstvima mikroorganizama kojima je zaražen.

Kontrola temperature u sterilizacijskoj komori provodi se povremeno pomoću bakterioloških testova. Biotestove proizvode bakteriološki laboratoriji Centra za osjetljive znanosti. Ako ovi testovi nisu prošli, provjerava se tehničko stanje autoklava.

Sterilizacija strujom vodene pare. Sterilizacija s protočnom parom provodi se u Kochovom aparatu s protočnom parom ili u autoklavu s odvrnutim poklopcem i otvorenim izlaznim ventilom. Kochov aparat je metalni šuplji cilindar s dvostrukim dnom. Prostor između gornje i donje donje ploče je 2/3 ispunjen vodom (postoji slavina za ispuštanje preostale vode nakon sterilizacije). Poklopac uređaja ima rupu u sredini za termometar i nekoliko malih rupa za izlazak pare. Materijal koji se sterilizira labavo se stavlja u komoru uređaja kako bi se osigurao maksimalan kontakt s parom. Početkom sterilizacije smatra se vrijeme od trenutka kada voda proključa i para uđe u sterilizacijsku komoru. U aparatu s fluidnom parom uglavnom se steriliziraju hranjivi mediji čija se svojstva mijenjaju na temperaturama iznad 100°C. Sterilizaciju protočnom vodenom parom potrebno je ponoviti jer jednokratno zagrijavanje na temperaturi od 100°C ne osigurava potpunu dezinfekciju. Ova metoda se naziva frakcijska sterilizacija: sterilizirani materijal se tretira s tekućom parom 30 minuta dnevno tijekom 3 dana. U intervalima između sterilizacija materijal se drži na sobnoj temperaturi kako bi spore proklijale u vegetativne oblike koji ugibaju tijekom naknadnog zagrijavanja.

Tindalizacija. Tyndalizacija je frakcijska sterilizacija primjenom temperatura ispod 100°C, koju je predložio Tyndall. Materijal koji se sterilizira zagrijava se u vodenoj kupelji opremljenoj termostatom jedan sat na temperaturi od 60-65°C tijekom 5 dana ili na 70-80°C tijekom 3 dana. U razmacima između zagrijavanja tretirani materijal se drži na temperaturi od 25°C kako bi spore proklijale u vegetativne oblike koji naknadnim zagrijavanjem ugibaju. Tindalizacija se koristi za defertilizaciju hranjivih medija koji sadrže proteine.

Mehanička sterilizacija pomoću bakterijskih ultrafiltera. Bakterijski filtri služe za oslobađanje tekućine od bakterija koje se u njoj nalaze, kao i za odvajanje bakterija od virusa, faga i egzotoksina. Bakterijski filteri ne zadržavaju viruse, pa se ultrafiltracija ne može smatrati sterilizacijom u prihvaćenom značenju te riječi. Za izradu ultrafiltera koriste se fino porozni materijali (kaolin, azbest, nitroceluloza itd.) koji mogu uhvatiti bakterije.

Azbestni filteri (Seitz filteri) su azbestne ploče debljine 3-5 mm i promjera 35 i 140 mm za filtriranje malih i velikih količina tekućine. Kod nas se azbestni filtri proizvode u dvije marke: “F” (filtrirajući), koji zadržavaju suspendirane čestice, ali propuštaju bakterije, i “SF” (sterilizirajući), gušći, zadržavajuće bakterije. Prije upotrebe azbestni filtri se montiraju u filtarske uređaje i zajedno s njima steriliziraju u autoklavu. Azbestni filteri se koriste jednokratno. Membranski ultrafilteri izrađeni su od nitroceluloze i bijeli su diskovi promjera 35 mm i debljine 0,1 mm.

Bakterijski filteri se razlikuju po veličini pora i označeni su serijskim brojevima (Tablica 3).

Tablica 3.

Bakterijski filteri

Neposredno prije upotrebe membranski filteri se steriliziraju kuhanjem. Filtri se stave u destiliranu vodu, zagrijanu na temperaturu od 50-60°C, da se ne uvrnu, i kuhaju na laganoj vatri 30 minuta, uz 2-3 puta mijenjanje vode. Kako bi se izbjegla oštećenja, sterilizirani filteri se iz sterilizatora vade flambiranom i ohlađenom pincetom s glatkim vrhovima.

Za filtriranje tekućina, bakterijski filtri se postavljaju u posebne filtarske uređaje, posebno Seitz filtar.

Sastoji se od 2 dijela: gornjeg, u obliku cilindra ili lijevka, i donjeg potpornog dijela aparata, s tzv. filter je postavljen. Potporni dio aparature ima oblik lijevka, čiji se suženi dio nalazi u gumenom čepu grla Bunsenove tikvice. U radnom stanju, gornji dio uređaja je fiksiran na donji dio vijcima. Prije početka filtracije, spojevi različitih dijelova instalacije pune se parafinom kako bi se stvorila brtva. Odvodna cijev tikvice spojena je gumenom cijevi debelih stijenki na vodenu, uljnu ili biciklističku pumpu. Nakon toga se filtrirana tekućina ulije u cilindar ili lijevak aparata i uključi pumpa, stvarajući vakuum u prihvatnoj posudi. Kao rezultat nastale razlike tlaka, filtrirana tekućina prolazi kroz pore filtera u prijemnik. Mikroorganizmi ostaju na površini filtera.

Priprema razmaza

Za proučavanje mikroorganizama u obojenom obliku, razmaz se napravi na stakalcu, osuši, fiksira i zatim oboji.

Ispitni materijal se raspoređuje u tankom sloju po površini dobro odmašćenog predmetnog stakla.

Brisevi se pripremaju iz mikrobnih kultura, patološkog materijala (sputum, gnoj, urin, krv i dr.) i iz organa lešina.

Tehnika pripreme razmaza određena je prirodom materijala koji se ispituje.

Izrada razmaza iz mikrobnih kultura s tekućom hranjivom podlogom i iz tekućeg patološkog materijala (urin, cerebrospinalna tekućina i dr.). Mala kap ispitivane tekućine se bakterijskom petljom nanese na predmetno staklo i kružnim pokretima petlje se rasporede u ravnomjernom sloju u obliku kruga promjera novčića.

Priprema krvnih razmaza. Kap krvi se nanosi na predmetno staklo, bliže jednom od njegovih krajeva. Drugo - brušeno staklo, koje treba biti uže od predmetnog stakla, stavlja se na prvo pod kutom od 45° i prinosi kapi krvi dok ne dođe u dodir s njom. Nakon što se krv razlila po brušenom rubu, staklom se klizi s desna na lijevo, ravnomjerno raspoređujući krv u tankom sloju po cijeloj površini stakla. Debljina poteza ovisi o kutu između stakala: što je kut oštriji, potez je tanji. Pravilno pripremljen bris ima svijetloružičastu boju i jednaku debljinu u cijelosti.

Priprema guste kapljice. Kap krvi nanese se na sredinu stakalca pomoću Pasteurove pipete ili se staklo nanese izravno na kap krvi koja strši. Krv nanesena na staklo razmazuje se bakterijskom petljom tako da promjer dobivene mrlje odgovara veličini kovanice od penija. Staklo se ostavi u vodoravnom položaju dok se krv ne osuši. Krv u "debeloj kapi" raspoređena je neravnomjerno, tvoreći neravni rub.

Priprema razmaza od viskoznog materijala (ispljuvak, gnoj). Sputum ili gnoj naneseni na stakalce bliže uskom rubu prekrivaju se drugim stakalcem. Čaše su lagano pritisnute jedna na drugu.

Nakon toga se slobodni krajevi stakla hvataju prstima 1 i 2 obje ruke i pomiču u suprotnim smjerovima tako da pri pomicanju oba stakla čvrsto prianjaju jedno uz drugo. Rezultat su razmazi s ravnomjerno raspoređenim materijalom koji zauzima veliko područje.

Izrada razmaza iz kultura s čvrstih hranjivih podloga. U sredinu čistog, dobro namazanog stakalca stavi se kap vode, au nju se stavi bakterijska petlja s malom količinom mikrobne kulture koja se proučava, tako da kap tekućine postane lagano zamućena. Nakon toga se višak mikrobnog materijala na omči spali u plamenu i razmaz se pripremi prema gore opisanoj metodi.

Izrada razmaza iz organa i tkiva. U svrhu dezinfekcije, površina organa se kauterizira zagrijanim čeljustima pincete, na tom mjestu se napravi rez i iz dubine se šiljastim škarama izrezuje komadić tkiva koji se stavlja između dva predmetna stakla. . Zatim postupite na isti način kao kod pripreme razmaza od gnoja i sputuma. Ako je tkivo organa gusto, tada se iz dubine reza napravi struganje skalpelom. Materijal dobiven struganjem se skalpelom ili bakterijskom petljom raspoređuje u tankom sloju po površini stakla.

Za proučavanje relativnog položaja elemenata tkiva i mikroorganizama u njemu, izrađuju se razmazi otisaka prstiju. Da bi se to učinilo, komadić tkiva izrezan iz sredine organa uhvati se pincetom i nekoliko puta uzastopno nanese izrezanom površinom na predmetno staklo, čime se dobije niz mrlja-otisaka.

Sušenje i fiksiranje razmaza. Razmaz pripremljen na stakalcu suši se na zraku i fiksira nakon potpunog sušenja. Kada se fiksira, razmaz se fiksira na površini stakalca, pa se mikrobne stanice ne isperu tijekom naknadnog bojenja preparata. Osim toga, mrtve mikrobne stanice bolje se boje od živih.

Postoji fizička metoda fiksacije, koja se temelji na učinku visoke temperature na mikrobnu stanicu, i kemijska metoda, koja uključuje korištenje sredstava koja uzrokuju koagulaciju proteina. Nemojte snimati razmaze koji sadrže patogene skupine patogenosti I–II iznad plamena.

Fizička metoda fiksacije. Predmetno stakalce s preparatom uzima se pincetom ili prstima I i II desne ruke za rebra s potezom prema gore i lagano se pomiče 2-3 puta preko gornjeg dijela plamena plamenika. Cijeli postupak fiksacije ne bi trebao trajati više od 2 sekunde. Pouzdanost fiksacije provjerava se sljedećom jednostavnom tehnikom: nerazmazana površina predmetnog stakla nanese se na stražnju površinu lijeve ruke. Kada je razmaz pravilno fiksiran, staklo bi trebalo biti vruće, ali ne izazivati ​​osjećaj peckanja.

Metoda kemijske fiksacije. Za fiksiranje razmaza također se koriste kemikalije i spojevi navedeni u tablici 4.

Tablica 4.

Supstance za kemijsku fiksaciju

Predmetno staklo s osušenim razmazom uroni se u bočicu s fiksatorom i potom osuši na zraku.

Potezi bojanja

Tehnika slikanja razmazom. Za bojenje mrlja koriste se otopine boja ili papir za bojanje, kako je predložio A.I. Sinev. Jednostavnost pripreme, laka upotreba, kao i mogućnost čuvanja papira s tintom na neodređeno dugo vrijeme bili su osnova za njihovu široku upotrebu u raznim metodama bojanja.

Bojanje poteza s tuš papirom. Na osušeni i fiksirani preparat nakapa se nekoliko kapi vode i stave papirići u boji dimenzija 2´2 cm.Papir za cijelo vrijeme bojenja treba ostati vlažan i čvrsto prianjati uz površinu stakla. Prilikom sušenja papir se dodatno navlaži vodom. Trajanje bojenja razmaza određeno je metodom bojenja. Po završetku bojenja papir se pažljivo ukloni pincetom, a razmaz ispere vodom iz slavine i osuši na zraku ili filtar papirom.

Bojenje razmaza otopinama boja. Na osušeni i fiksirani preparat pipetom se nanosi boja u tolikoj količini da prekrije cijeli razmaz. Kod bojenja razmaza koncentriranim otopinama bojila (Ziehl karbol fuksina, karbolnog encijana ili kristal violeta) bojenje se vrši preko filter papira koji zadržava čestice boje: na fiksirani razmaz stavi se traka filter papira i na nju se izlije otopina boje. .

Za mikroskopski pregled boje se pripremljeni razmazi, osušeni i fiksirani. Bojanje može biti jednostavno i složeno. Jednostavno bojanje uključuje nanošenje jedne boje na razmaz određeno vrijeme. Najčešće se za jednostavno bojenje koriste alkohol-voda (1:10) Pfeiffer fuksin, Lefflerovo metilensko plavo i safranin. Eozin, kao i kisela boja, koristi se samo za bojenje citoplazme stanica i nijansiranje pozadine. Kiseli fuksin potpuno je neprikladan za bojenje bakterija.

Pošaljite svoj dobar rad u bazu znanja jednostavno je. Koristite obrazac u nastavku

Studenti, diplomanti, mladi znanstvenici koji koriste bazu znanja u svom studiju i radu bit će vam vrlo zahvalni.

Objavljeno na http://www.allbest.ru/

GBOU SPO "Kislovodsk Medical College" Ministarstva zdravstva Rusije

Izvješće o temi:

" Uređaj"

Pripremio:

student 1. skupine SD - 314

Blokhina Natalija

Provjerio: Ulyanova N.M.

Kislovodsk

Organizacija laboratorija

Mikrobiološka istraživanja provode se u posebnim prostorijama koje se nazivaju mikrobiološki laboratorij.

Mikrobiološki laboratorij sastoji se od nekoliko prostorija:

Laboratorijska soba za istraživanje;

Prostorija za pripremu medija za kulturu;

Prostorija za pranje suđa (praonica);

Prostorija za sterilizaciju posuđa i podloga za uzgoj kultura (prostor za sterilizaciju);

Boks je izolirana prostorija za izvođenje radova koji zahtijevaju visoki stupanj sterilnosti. Da biste to učinili, prije rada, zrak i drugi predmeti u njemu se dezinficiraju.

Pravila rada V mikrobiološki laboratorij poseban režim

Prije ulaska u laboratorij svi zaposlenici skidaju gornju odjeću u garderobi, au susjednoj prostoriji s individualnim ormarima - ostalu odjeću i rublje, oblače pidžame, medicinski ogrtač, maramu i čarape. Pri radu u sekcijskom dijelu nosi se protukužno odijelo, drugi sekcijski ogrtač, kaciga, maska ​​od pamučne gaze i gumene rukavice.

Oprema mikrobiološki laboratorij

Mikrobiološku laboratorijsku opremu čine: optički instrumenti (mikroskopi, povećala), termički instrumenti (termostati, autoklavi, Kochovi aparati, sušionice, hladnjaci), mikrobiološki instrumenti (bakteriološke igle, petlje, špatule) i kirurški instrumenti (skalpeli, pincete, držači, škare). ), kao i epruvete, Petrijeve zdjelice, pokrovna stakla i predmetna stakla, staklene epruvete, kapaljke s bojama. Laboratorij mora imati hranjive podloge (suhi hranjivi agar, Kessler medij, Endo medij), agar-agar, želatinu, analinske boje ( fuksin, encijan violet, metilensko plavo, metilensko plavo), razne kiseline, lužine, soda.

Meh mikrobiološke metode istraživanje

Za proučavanje mikroorganizama koristi se nekoliko specifičnih metoda. Glavne vrste mikrobioloških studija su:

bakterioskopski (mikroskopski) - proučavanje oblika i strukture mikroorganizama pomoću mikroskopa;

bakteriološki - proučavanje kultura mikroorganizama uzgojem, tj. uzgoj na umjetnim hranjivim podlogama;

eksperimentalni - određivanje mikroorganizama i njihovih otrova inficiranjem pokusnih životinja (miševa, bijelih štakora, zamoraca). Najčešće se koristi za identifikaciju uzročnika trovanja hranom;

serološki - određivanje mikroorganizama pomoću krvnog seruma koji sadrži protutijela. Ova metoda ima široku primjenu u medicinskoj mikrobiologiji.

Metodom bakteriološkog istraživanja određuju se kulturalna svojstva (veličina, oblik, struktura, boja, sjaj, profil pojedine kolonije) i biokemijska svojstva mikroorganizama (sposobnost fermentacije tvari uključenih u različite hranjive medije). Tijekom bakterioskopskog pregleda utvrđuju se morfološke značajke (veličina, oblik i dr.) pojedinih mikroorganizama i njihova sposobnost bojenja različitim bojama. Budući da u prirodi postoji mnogo mikroba blizanaca koji su međusobno slični, stoga, za određivanje vrste mikroorganizama, sama bakterioskopija obično nije dovoljna, potrebno je koristiti bakteriološku metodu istraživanja.

P Pravila za rad u mikrobiološkom laboratoriju

Rad u mikrobiološkim laboratorijima mora se odvijati u sterilnim uvjetima, što je osnovno sigurnosno pravilo. Provođenje mikrobiološkog rada u sterilnim uvjetima treba osigurati sprječavanje kontaminacije vanjskog okoliša i radnog osoblja mikrobima iz materijala koji se proučava, kao i same čiste kulture izolirane stranim mikroorganizmima iz okoliša.

Pri radu u mikrobiološkom laboratoriju treba se pridržavati sljedećih pravila:

biti u laboratoriju i raditi u njemu mora biti u laboratorijskoj kuti;

koristiti stalno radno mjesto;

održavajte red na radnom mjestu, ne držite nikakve strane predmete u njemu;

nakon rada s mikroorganizmima pincete, spatule, mikrobiološke petlje i igle, pipete spaliti u plamenu alkoholne lampe ili ih uroniti u posudu s otopinom za dezinfekciju (kloramin, dizol, karbolna kiselina);

sve upotrijebljene materijale s mikroorganizmima - istrošene pripravke iz živih kultura, privremene pripravke i sl. - potrebno je prvo neutralizirati sterilizacijom ili dezinfekcijom i tek potom oprati;

Na kraju nastave pospremite svoj radni prostor, skinite haljine, a nakon toga obavezno operite ruke.

U laboratoriju zabranjeno:

nositi šešire i vanjsku odjeću;

rad bez ogrtača;

jesti, piti vodu, pušiti;

staviti strane predmete na stolove;

dodirujte lice neopranim rukama;

Izbjegavajte nepotrebno hodanje, nagle pokrete, propuhe, koji pridonose kontaminaciji ispitnog materijala stranom mikroflorom.

U izgradnja mikrobiološkog laboratorija

Mikrobiolozi se bave populacijama (kulturama) mikroorganizama koje se sastoje od milijuna jedinki. Kultura koja sadrži mikroorganizme iste vrste naziva se čist. Ako kultura sadrži više od jedne vrste mikroorganizama, naziva se mješovitom. U mikrobiološkoj praksi uglavnom se koriste čiste kulture mikroorganizama. Zbog činjenice da se u zraku i na površini predmeta (na stolovima, alatima, odjeći), kao i na rukama, kosi itd. Uvijek postoji veliki broj različitih mikroorganizama; potrebno je stalno paziti na održavanje čistoće kultura koje se proučavaju. Zahtjev za čistoćom kultura uvelike određuje specifičnosti dizajna mikrobiološkog laboratorija i pravila rada mikrobiologa.

Mikrobiološki laboratorij obuhvaća više prostorija u kojima se obavlja rad s mikroorganizmima ili priprema za rad s mikroorganizmima. Najsvjetlije, najprostranije prostorije raspoređene su za laboratorijske prostorije, čija bi prirodna osvijetljenost trebala biti najmanje 110 luksa. Površina stolova i pod svih laboratorijskih prostorija obloženi su materijalom koji se lako čisti - plastikom ili linoleumom, a zidovi do visine 170 cm od poda obojeni su svijetlim bojama. Glavna radna soba opremljena je stolovima laboratorijskog tipa, ormarima i policama za odlaganje opreme, staklenog posuđa i reagensa. Stolovi su opremljeni strujom i plinskim plamenicima.

Pored glavne radne prostorije, laboratorij ima prostoriju za sterilizaciju u kojoj su smješteni autoklavi i sušionice, termostatiranu prostoriju za uzgoj mikroorganizama, prostoriju za čuvanje kultura mikroorganizama, hladnjaču, praonicu i dr. Presijavanje mikroorganizama provodi se u kutijama različitih dizajna - od izoliranih prostorija do stolnih komora (laminari),Čistoća atmosfere radnog prostora osigurana je cirkulacijom sterilnog strujanja zraka unutar komore.

PosaoVnapa laminar flow. Dizajn nape s laminarnim protokom omogućuje sterilan rad s mikroorganizmima u nesterilnoj prostoriji. Kabineti s laminarnim protokom Postoje dva stupnja zaštite - klasa I i klasa P. Laminari klase I opremljeni su propuhom ventilacije nesterilnog zraka iz prostorije i izlazom tog zraka u istu prostoriju nakon filtracije (zaštita od mikrobnih aerosola) i u u strogom smislu riječi nisu prikladni za sterilan rad. Laminarni podovi s klasom zaštite II (slika 2.1) formiraju struju sterilnog zraka unutar kutije, koji se uzima iz prostorije i koji se sterilizira prolazeći kroz bakterijske filtere. Tako unutarnje površine kutije ostaju sterilne. Dizajn također omogućuje sterilno sijanje mikroorganizama u struji sterilnog zraka koji je prošao kroz bakterijske filtre i raspoređen unutar laminara u obliku laminarnog toka (bez turbulencije). Rad u laminaru, međutim, zahtijeva korištenje aseptične tehnike (rad u blizini plamena plamenika).

Prije početka rada laminat je potrebno oprati otopinama neutralnih deterdženata, a sve dostupne unutarnje površine sterilizirati kemijskim dezinficijensom (70% etanol). Tijekom rada, laminat se mora prati jednom mjesečno, uklanjajući uklonjive površine i čisteći prostor ispod njih. Nakon pranja, ploče s instrumentima ponovno se steriliziraju etanolom.

Laminarni bakterijski filtri moraju se podvrgnuti postupku kemijske dezinfekcije jednom u 1 do 2 mjeseca, ovisno o intenzitetu korištenja. Kemijska dezinfekcija unutarnje površine laminara, a posebno njegovih filtara, provodi se parama formaldehida. U tu svrhu se u porculansku šalicu ulije 50 ml 37% otopine formaldehida (formalina), postavi na stalak i zagrijava za polagano (30 min) isparavanje formaldehida. Laminarna zračna pumpa mora biti uključena kako bi se pare dezinficijensa ravnomjerno rasporedile po unutarnjem volumenu komore; zatvorena je zaklopka za izlaz zraka, kao i prednji poklopac uređaja. Prilikom sterilizacije laminara, ljudi moraju napustiti prostoriju. Nakon što formaldehid potpuno ispari, grijač i zračna pumpa se isključe, laminarni pod se ostavi jedan dan radi dezinfekcije, a zatim se ventilira od zaostalih para formaldehida. Da biste to učinili, otvorite prednji poklopac uređaja, uključite zračnu pumpu i otvorite zaklopku za izlaz zraka. Uređaj se ostavi u radnom stanju 15-20 minuta, a zatim je spreman za upotrebu. Prilikom čišćenja uređaja od para formaldehida, prostorija mora biti dobro prozračena, a ljudi je moraju napustiti za to vrijeme.

Priprema mikrobiološkog laboratorija za rad

Mikrobiološki laboratorij mora se održavati čistim. Ne smije sadržavati nepotrebne predmete. Higijensko čišćenje laboratorijskih prostorija treba provoditi redovito. Vrlo je teško osigurati potpunu sterilnost laboratorija i nije uvijek potrebna, ali je moguće značajno smanjiti broj mikroorganizama u zraku i na raznim površinama u laboratorijskim prostorijama. Za to se koriste različite metode dezinfekcije. Riječ "dezinfekcija" označava dezinfekciju, odnosno uništavanje uzročnika zaraznih bolesti na objektima okoliša. Međutim, tijekom dezinfekcijskog tretmana umiru ne samo patogene, već i saprotrofne bakterije. Ponekad postupak dezinfekcije ima učinak sterilizacije.

Obrada prostorija mikrobiološki laboratorij

Pod, zidovi I namještaj u mikrobiološkom laboratoriju se vakumiraju i brišu otopinom raznih dezinficijensa. Usisavanje osigurava da se predmeti čiste od prašine i s njih uklanja značajan broj mikroorganizama. Utvrđeno je da se četkom usisavača prijeđe četiri puta po površini predmeta s njega se ukloni približno 47 % mikroorganizama, a 12 puta čak do 97 %. Najčešće korištene otopine za dezinfekciju su 2 - 3% otopina sode (natrijeve bikarbone), 3 - 5% vodena otopina fenola (karbolna kiselina) ili Lysol (fenolni pripravak s dodatkom zelenog sapuna), 0,5 - - 3% vodena otopina kloramina i neka druga sredstva za dezinfekciju.

Zrak V laboratorijima čistiti prozračivanjem - to je najlakši način. Dugotrajnim provjetravanjem prostorija kroz prozor (barem 30-60 minuta) naglo se smanjuje broj mikroorganizama u zraku, posebno kada postoji značajna razlika u temperaturi između vanjskog zraka i zraka u prostoriji. Učinkovitija i najčešće korištena metoda dezinfekcije zraka je ultraljubičasto zračenje zrakama valne duljine 260 nm. Ove zrake imaju visoko antimikrobno djelovanje i mogu uzrokovati smrt ne samo vegetativnih stanica, već i spora mikroba.

Izlaganje ultraljubičastim zrakama mora biti trenutno i dugotrajno. To je prije svega zbog činjenice da ultraljubičaste zrake imaju slabu sposobnost prodora. Na primjer, ne prolaze kroz obično staklo i lako ih apsorbiraju čestice prašine. Osim toga, listovi bijelog papira, aluminijske i kromirane ploče te predmeti od njih mogu značajno reflektirati ultraljubičaste zrake. Stoga je, ovisno o stupnju onečišćenja zraka, za sterilizaciju potrebno zračenje od 30 minuta do nekoliko sati.

Koristi se kao izvor ultraljubičastog zračenja baktericidne lampe. Emiter u njima je električni luk koji se javlja u živinim parama niskog tlaka. Više od 80% spektra koji emitiraju pada na valnu duljinu od 254 nm. Obično su baktericidne svjetiljke cijevi različitih promjera i duljina, izrađene od posebnog stakla koje propušta zračenje valne duljine od 254 nm. Svaka cijev je montirana u kućište držača i može biti opremljena reflektorom. Mora se imati na umu da ultraljubičaste zrake mogu ozbiljno oštetiti oči, stoga, kada radite s baktericidnim svjetiljkama, morate strogo osigurati da ni izravne ni reflektirane ultraljubičaste zrake ne ulaze u oči. Ne možete biti u malim sobama s uključenom baktericidnom svjetiljkom. Također treba uzeti u obzir da se s dugotrajnim kontinuiranim radom baktericidne svjetiljke intenzitet zračenja smanjuje. U tim slučajevima preporučljivo je zračenje provoditi povremeno.

radno mjesto, gdje se izravno radi s kulturama mikroorganizama, zahtijeva posebno pažljivu obradu. Radni stol treba dezinficirati ne samo prije početka rada, već i nakon završetka. Za brisanje površine stola možete koristiti otopine lizola i kloramina, kao i 70% (po volumenu) otopine izopropilnog ili etilnog alkohola. Alkoholi su vrlo učinkoviti protiv vegetativnih oblika mikroorganizama. Ovi se alkoholi mogu koristiti i za dezinfekciju ruku. U slučajevima kada površina stola ima vodoodbojni premaz, Lysol je posebno prikladan. Površina radne površine također se može dezinficirati ultraljubičastim zrakama. Treba uzeti u obzir da je baktericidno djelovanje zraka to veće što je ozračena površina bliže izvoru zračenja.

U laboratoriju nije dopušteno pušenje, skladištenje i konzumiranje hrane, pića i žvakaćih guma. Trebali biste raditi u kućnim haljinama.

Vođenje laboratorijske dokumentacije

Dnevnik laboratorijskog rada je dokument koji omogućuje kontrolu ispravnosti dobivenih rezultata. Treba sadržavati podatke relevantne za obavljanje ovog posla. Snimak se mora voditi jasno, točno i određenim redoslijedom, npr.

Naziv pokusa i njegova svrha, datum provedbe i završetka.

Predmet proučavanja.

Uvjeti za izvođenje pokusa.

Osnovni princip korištene metode analize.

Rezultati.

Digitalna građa data je u tablicama. Ako je potrebno, napravite grafikone, dijagrame, crteže. Svaki laboratorijski rad treba završiti vlastitim zapažanjima i zaključcima zabilježenim u dnevniku. Dnevnik je vlasništvo laboratorija u kojem je rad obavljen i uvijek se čuva u laboratoriju.

Pravila za rad s kulturama mikroorganizama

U laboratoriju se mikroorganizmi uzgajaju na krutim i tekućim hranjivim podlogama koje se ulijevaju u epruvete, tikvice, madrace i Petrijeve zdjelice (slika 2.2). Posuđe i hranjivi mediji su prethodno sterilizirani.

Unošenje mikroorganizama u sterilnu sredinu naziva se sjetva, ili inokulacija. Inokulacija mikroorganizama zahtijeva poštivanje određenih pravila koja se moraju poštovati kako bi se kultura koja se proučava zaštitila od kontaminacije stranim mikroorganizmima. Prije sjetve treba pažljivo napisati na epruvetu (tikvica ili Petrijeva zdjelica) naziv mikroorganizma i datum sjetve.

Uzimaju se stanice mikroorganizama za sjetvu ili pripremu pripravaka bakteriološka petlja ili igla(Sl. 2.3), ako se mikroorganizmi uzgajaju na čvrstoj podlozi. U slučaju kada se mikroorganizmi uzgajaju u tekućem hranjivom mediju, bolje je koristiti sterilnu pipetu, a ne petlju. Bakteriološke petlje i igle izrađuju se pomoću tanke žice od volframa ili nikroma, koja se učvršćuje u metalnom ili staklenom držaču. Promjer bakteriološke petlje je 4 - 5 mm.

Bakteriološka omča (igla) se sterilizira prije uzimanja stanica mikroorganizma. Da bi se to postiglo, žica se užari u plamenu plamenika i istovremeno se spali dio držača uz petlju, koji će se umetnuti u posudu s mikroorganizmima. Preporuča se držati petlju gotovo okomito u plamenu plamenika kako bi se žica ravnomjerno zagrijala. Prilikom kalciniranja mora se imati na umu da se najviša temperatura razvija u gornjim i perifernim dijelovima plamena (slika 2.4), tako da ne smijete spuštati petlju izravno na plamenik. Neposredno nakon sterilizacije u posudu s mikroorganizmima uvodi se petlja (igla). Kako se ne bi oštetile stanice mikroorganizama, omča (igla) se najprije ohladi dodirom na unutarnju površinu posude ili na hranjivu podlogu bez mikrobnih stanica, a tek nakon toga se uhvati mala količina mikrobne mase. .

Priprema lijekova

mikrobiološka laboratorijska obrada lijek

Pripravci se pripremaju, u pravilu, na stakalcima, čija debljina ne smije biti veća od 1,2-1,4 mm. Deblja stakla ne dopuštaju dobivanje oštre slike rubova dijafragme iluminatora u ravnini uzorka, jer se pojavljuje u debljini stakla, a to remeti fokusiranje kondenzora i oštro smanjuje jasnoću slike. Debeli dijapozitivi nisu prihvatljivi kada se radi s objektivom uronjenim u ulje gdje je neophodna puna upotreba numeričke aperture sustava.

Bitna točka je priprema površine stakalca, što je posebno važno kod izrade fiksnih preparata. Površina stakla mora biti temeljito očišćena i odmašćena kako bi se kapljica tekućine ravnomjerno rasporedila po staklu, a ne skupljala u konveksne kapljice koje se polako suše. Najpouzdaniji način odmašćivanja je tretiranje stakla smjesom kroma, nakon čega slijedi ispiranje vodom i alkoholom.

U svakodnevnom radu, međutim, sasvim je dovoljno suho staklo temeljito istrljati sapunom, a zatim ga prebrisati čistim pamučnim ubrusom. Dobro odmašćivanje postiže se brisanjem opranog i osušenog stakla vatom namočenom u eter (nakon toga nije potrebno ispiranje vodom) ili pečenjem površine stakla u plamenu plamenika (mast gori). Zabranjeno je kuhati staklo u otopinama lužina, uključujući deterdžente, kao i držati staklo u takvim otopinama duže vrijeme, jer lužine nagrizaju staklo, čineći njegovu površinu mutnom. Čiste čaše bez masti mogu se čuvati na suhom ili u etanolu.

Objavljeno na Allbest.ru

Slični dokumenti

Glavni ciljevi mikrobioloških istraživanja u kliničkoj laboratorijskoj dijagnostici. Oprema za bakteriološki laboratorij, visokoučinkovita automatizirana tehnologija za identifikaciju mikroorganizama, standardizacija mikrobiološke dijagnostike.

sažetak, dodan 09.10.2010


Faze rada mikrobiološkog laboratorija i vrijeme potrebno za svaku od njih. Normativni dokumenti. Opći uvjeti za uzimanje i dostavu uzoraka biološkog materijala za mikrobiološka istraživanja. Tumačenje rezultata ispitivanja.

prezentacija, dodano 26.04.2016


Obilježja djelatnosti kliničko-dijagnostičkog laboratorija u suvremenim uvjetima, procjena aktivnosti osoblja i tehnologija za povećanje njegove učinkovitosti. Opis rada medicinskog osoblja u laboratoriju, izrada preporuka za optimizaciju.

kolegij, dodan 28.06.2016


Mikrobiologija kao znanost, povijest njezina razvoja. Obilježja zadaća medicinske mikrobiologije. Klasifikacija mikroorganizama prema stupnju njihove biološke opasnosti. Organizacija službe mikrobiološkog laboratorija, pravila ponašanja i rada u njemu.

prezentacija, dodano 30.11.2015


Ruski regulatorni dokumenti koji reguliraju proizvodnju lijekova. Ustroj, funkcije i glavni zadaci ispitnog laboratorija za kontrolu kvalitete lijekova. Zakonodavni akti Ruske Federacije o osiguravanju jedinstvenosti mjerenja.

priručnik za obuku, dodan 14.5.2013


Upoznavanje s materijalima koji se koriste za izradu suvremenih proteza. Studij sheme automatizirane organizacije rada koja omogućuje izradu proteza CAD\CAM tehnologijom. Prednosti automatizacije zubotehničkog laboratorija.

prezentacija, dodano 11.10.2015


Glavni element zubotehničkog laboratorija je radni stol zubotehničara. Dizajn ovog stola, njegova oprema i osvjetljenje. Parametri opreme koja se koristi u uredu. Najvažniji kriteriji o kojima ovisi učinak stroja za lijevanje.

prezentacija, dodano 14.03.2016


Putevi prijenosa sifilisa - spolno prenosiva zarazna bolest koja zahvaća kožu, sluznice, unutarnje organe, kosti i živčani sustav uz sekvencijalnu promjenu stadija bolesti. Ranjivost zubotehničkog laboratorija na infekcije.

prezentacija, dodano 27.04.2016


Priprema instrumenata i materijala za operaciju. Sanitarni i higijenski režim u odjelima pacijenata s anaerobnom infekcijom. Mikrobiološki nadzor nad stanjem sanitarnog i protuepidemijskog režima. Režim posteljine u odjelu i laboratoriju.

priručnik za obuku, dodan 30.4.2009


Sigurnosna pravila pri radu u fiziološkom laboratoriju. Faze pripreme neuromuskularnog lijeka. Građa i fiziološke funkcije bioloških membrana ekscitabilnih tkiva. Galvanijev prvi i drugi pokus. Prag iritacije mišića.

TEMA LEKCIJE: Bakteriološki laboratorij i pravila rada u njemu. Klasifikacija mikroorganizama. Morfologija bakterija. Metode određivanja vrste mikroba. Bakterioskopska metoda. Mikroskopska tehnika s imerzijskim sustavom.

CILJ UČENJA SATA: Upoznati ustroj bakteriološkog laboratorija i pravila rada u njemu. Upoznati se s načelima klasifikacije mikroorganizama. Proučiti morfološka svojstva bakterija i metode određivanja vrste mikroba. Ovladati bakterioskopskom metodom pregleda i tehnikama mikroskopiranja imerzijskim sustavom.

CILJEVI SATA:

1. Upoznati se s ustrojem bakteriološkog laboratorija i pravilima rada u njemu.

2. Upoznati principe klasifikacije mikroorganizama.

3. Proučiti morfološka svojstva bakterija i metode određivanja vrste mikroba.

4. Ovladati tehnikom mikroskopiranja imerzijskim sustavom.

Izgradnja bakteriološkog laboratorija

Bakteriološki laboratorij namijenjen je proučavanju materijala koji sadrže uzročnike bakterijskih infekcija, određivanju sanitarnih i mikrobioloških pokazatelja, praćenju stanja i snage specifičnog imuniteta i drugim mikrobiološkim studijama. Bakteriološki laboratorij treba biti smješten u prostorijama izoliranim od drugih laboratorija s potrebnom opremom i namještajem. Laboratorij mora imati poseban ulaz, garderobu i tuš. Bakteriološki laboratorij treba imati sljedeće prostorije:

Prostorija za prijem i upis materijala;

Kutijaste sobe za mikrobiološka istraživanja;

Autoklav;

Pranje;

Vivarij.

Prostorije za mikrobiološka istraživanja opremljene su termostatima, hladnjacima, centrifugama, vagama, vodenim kupkama i elektromagnetskim mješalicama. Potrebna oprema je postavljena na stolove. Rad sa zaraženim materijalom provodi se u boks S predbokser. Na ulazu u boks treba biti prostirka natopljena otopinom za dezinfekciju. U kutiji se zaprimljeni uzorci razvrstavaju, pripremaju i snimaju brisevi otisaka prstiju te inokuliraju mikroorganizmi na hranjive podloge. Stoga se u kutiji nalaze stolovi na kojima su smješteni alati potrebni za rad: posude s otopinama za dezinfekciju rabljene staklene posude, stalci za epruvete, epruvete i Petrijeve zdjelice s hranjivim medijima, sterilne pipete, tarionici i dr. U pre -box u kantama, potrebno je imati sterilne mantile, šešire, maske, a također u predboxu treba imati cipele koje se mogu skidati. Pretboks može primiti termostate, hladnjake, centrifuge i drugu opremu. U boksovima i prostorima pred boksom svakodnevno se 30-40 minuta prije početka rada i nakon rada provodi mokro čišćenje, dezinfekcija i zračenje baktericidnim svjetiljkama.

U autoklav potrebno je imati dva autoklava: jedan autoklav za čiste materijale (za sterilizaciju posuđa, medija za kulture, instrumenata); drugi autoklav za zaražene materijale (za neutralizaciju zaraženih instrumenata i materijala).

Pranje dizajniran za pranje posuđa. Posuđe, pipete i instrumenti kontaminirani zaraženim materijalom peru se tek nakon sterilizacije. U njemu se nalaze ormari za sušenje.

Vivarij naziva se prostorija koja služi za držanje laboratorijskih životinja. Vivarij mora imati karantenski odjel, prostorije za pokusne i zdrave životinje, prostorije za pranje i dezinfekciju kaveza, opreme i zaštitne odjeće, kuhinju za pripremu hrane, smočnicu, prostoriju za stočnu hranu i spalionicu. Sve prostorije vivarija moraju biti izolirane jedna od druge.

Regulacija radnih uvjeta s uzročnicima zaraznih bolesti provodi se u skladu sa stupnjem opasnosti od mikroorganizama za ljude. Na temelju ovog kriterija identificirane su četiri skupine patogenih bioloških agenasa (PBA):

Grupa I: uzročnici posebno opasnih infekcija (kuga, velike boginje, itd.)

II skupina: uzročnici vrlo zaraznih bakterijskih, gljivičnih i virusnih infekcija (antraks, kolera, bjesnoća i dr.)

Grupa III: uzročnici bakterijskih, gljivičnih, virusnih i protozoalnih infekcija, izolirani u neovisne nosološke oblike (hripavac, tetanus, tuberkuloza, itd.)

Grupa IV: uzročnici bakterijske, gljivične, virusne septikemije, meningitisa, upale pluća, enteritisa, toksičnih infekcija, akutnih trovanja (infekcija pseudomonasom itd.).

Većina mikrobioloških laboratorija radi s patogenim uzročnicima III i IV skupine, a samo specijalizirani laboratoriji proučavaju uzročnike posebno opasnih infekcija (I i II skupina).

Osnovni laboratoriji koji rade s patogenim biološkim agensima III i IV skupine moraju ispunjavati niz uvjeta (posebna zgrada ili poseban ulaz, postojanje sustava za opskrbu vodom i električnom energijom, grijanje, ventilacija itd.) i imati potreban skup prostorija u sukladno proizvodnom kapacitetu i opsegu izvedenih studija. Svaki laboratorij mora imati “čist” i “prljav” prostor.

“Prljava” zona uključuje prostorije za prijem i snimanje materijala, boksove i prostorije za provođenje mikrobioloških istraživanja, termostat i autoklav za dezinfekciju materijala. Prozori i vrata svih prostorija moraju biti dobro zatvoreni. Prostorije za rad sa živim mikroorganizmima moraju biti opremljene baktericidnim svjetiljkama ili imati biološke sigurnosne ormare. Dovodna i ispušna ventilacija "prljavog" prostora mora biti opremljena filtrima za fino pročišćavanje ispušnog zraka. Obvezno je označavanje stolova, autoklava, posuda s otopinama za dezinfekciju i polica za čisti i zaraženi materijal. Laboratorij mora biti opremljen posebnim namještajem i imati glatke podne i zidne površine koje su otporne na deterdžente i dezinficijense.

„Čista“ zona uključuje prostorije za pripremne radove (praonica, prostorija za pripremu, prostorija za pripremu i punjenje podloga za kulturu itd.), prostorija za rad s dokumentacijom, prostorije s hladnjacima za pohranu podloga za kulturu i dijagnostičkih lijekova, garderoba za vanjska odjeća, soba za odmor. U “čistoj” zoni moguće je raditi s neživim patogenima (serološke, molekularno genetičke, biokemijske studije).

Osiguranje sigurnosti rada s patogenim mikroorganizmima uključuje dva glavna čimbenika: tehnički i ljudski. Tehnički čimbenik je dostupnost "čistih" i "prljavih" zona, opreme, zaštitnih sustava itd. potrebnih za rad. Ljudski čimbenik je ispravnost čovjekovih postupaka za osiguranje sigurnosti, stupanj vladanja profesionalnom opremom, poznavanje mogućih izvora i mehanizama infekcije, odgovarajuća priprema i obuka.

Rad u bakteriološkom laboratoriju za obuku također je povezan s dva opasna čimbenika - mikroorganizmima koji uzrokuju zarazne bolesti i otvorenom vatrom, što zahtijeva poštivanje mjera zaštite od epidemije i požara. Učenici su dužni upoznati se sa sigurnosnim pravilima i strogo ih se pridržavati:

Potrebno:

· rad u medicinskim ogrtačima dugih rukava, medicinskim kapama i navlakama za cipele;

· pohraniti osobne stvari na posebno određeno mjesto, gornju odjeću ostaviti u ormaru;

· svaka vrsta aktivnosti provodi se u određenom prostoru: rad s mikroorganizmima - na posebno opremljenom laboratorijskom stolu, ispunjavanje protokola - na stolu;

· ako zaraženi materijal dospije na stol, pod ili druge predmete, odmah obavijestiti učitelja i izvršiti dezinfekciju;

· Zaražene materijale treba staviti u izdržljive, vodootporne spremnike ili spremnike s otopinom za dezinfekciju koji su zapečaćeni prije uklanjanja iz laboratorija.

· Vrata laboratorija moraju biti zatvorena tijekom rada.

· Nakon završetka rada temeljito operite ruke i po potrebi ih tretirajte otopinom za dezinfekciju.

· jesti u laboratoriju

· ustima uvlačite tekućinu u pipetu

· upaliti jednu alkoholnu lampu od druge

· nositi goruću alkoholnu lampu

· ostavite alkoholnu lampu da gori nakon završetka predviđene uporabe

· ostaviti na radnom mjestu nefiksirane pripravke, Petrijeve zdjelice s kulturama i druge posude s infektivnim materijalom

rukama dodirujte ispitni materijal u Petrijevim zdjelicama sa klicama

Stranica 5 od 91

Za provođenje mikrobioloških istraživanja postoje bakteriološki laboratoriji u bolnicama i klinikama ili neovisno o njima. Za istraživanje primaju različite materijale dobivene od bolesnih ljudi (ispljuvak, urin, gnoj, izmet, krv, cerebrospinalna tekućina itd.). Osim toga, postoje i sanitarni i bakteriološki laboratoriji u kojima se voda, zrak i prehrambeni proizvodi podvrgavaju bakteriološkoj kontroli.
Velika je uloga bakterioloških laboratorija iu prevenciji zaraznih bolesti. Neki ljudi nakon preboljele zarazne bolesti (trbušni tifus, dizenterija, difterija itd.) nastavljaju oslobađati patogene mikrobe u okoliš. To su takozvani nosioci bakterija. Nositelji bakterija nalaze se i među zdravim ljudima. Bakteriološki laboratoriji otkrivanjem takvih nositelja bakterija pomažu zdravstvenim vlastima u provođenju niza preventivnih mjera.
Voda i prehrambeni proizvodi kontaminirani patogenim mikroorganizmima mogu izazvati epidemije (masovne bolesti) trbušnog tifusa, kolere i dr., zbog čega je važna svakodnevna sanitarna i bakteriološka kontrola kakvoće vode za piće, mlijeka i drugih proizvoda.
Bakteriološki laboratorij mora raspolagati s najmanje tri prostorije: 1) sobicom - upisnicom za prijem i izdavanje pretraga; 2) srednje kuhanje i pranje - za pripremu hranjivih medija i pranje posuđa; 3) laboratorij za bakteriološka istraživanja. Preporučljivo je imati prostoriju za držanje pokusnih životinja (vivarij). Svaka prostorija treba imati odgovarajući namještaj (kuhinjski i laboratorijski stolovi, razni ormari, taburei i sl.).
Slijedi popis najvažnijih predmeta potrebnih za svakodnevni laboratorijski rad. Svrha njihove uporabe, način rukovanja njima, kao i princip njihovog dizajna opisani su u relevantnim dijelovima tečaja.
Optički uređaji. Biološki mikroskop s imerzijskim sustavom, povećala, aglutinoskop.
Uređaji za sterilizaciju i grijanje. Autoklav, aparati za fluidnu paru, sušionica, Seitz filteri, termostati, sterilizatori za instrumente.
Oprema za kuhanje medija. Lijevak za vruće filtriranje, lijevak za ulijevanje medija, vodena kupelj, posude različitih veličina, tarirane vage s utezima, stroj za mljevenje mesa, metalni i drveni stalci za filtriranje.
Alati. Skalpeli raznih oblika i vrsta: škare, ravne, zakrivljene, tupog vrha, crijevne škare, anatomske i kirurške pincete, šprice.
Stakleni predmeti. Predmetna stakla, stakalca s jažicom, pokrovna stakalca, bakteriološke epruvete, kratke epruvete za serološke reakcije (aglutinaciju), centrifuge, Heidepreichove zdjelice*, staklene epruvete i štapići, graduirane pipete od 1, 2, 5, 10 ml, Pasteurove pipete, staklo boce za boju s pipetama, staklene čaše i tikvice različitih veličina, cilindri različitih veličina, lijevci za filtriranje itd.

*Do sada se kod većine mikrobiologa iu udžbenicima posude za dobivanje izoliranih kolonija mikroba nazivaju Petrijevim, a ne Heidenreichovim zdjelicama, što ne odgovara pravom stanju stvari. Čaše je u laboratorijsku praksu prvi uveo ruski mikrobiolog Heidenreich.

Razni predmeti. Bakterijska petlja, platinasta žica, gumene cijevi, ručne rogaste vage s utezima, stalci (drveni, metalni) za epruvete, termometri, kavezi za životinje, uređaji za fiksiranje životinja, centrifuga.
Kemikalije, boje, materijali za medije itd. Agar-agar, želatina, bijela u listićima, ulje za uranjanje, filter papir, upijajuća i obična vata, gaza, etilni alkohol, anilinske boje (magenta, gentian i kristal violet, vesuvin, metilen plava, neutralna, safranin itd.), Giemsa boja, kiseline (dušična, klorovodična, sumporna, karbolna, fosforna, pikrinska, oksalna itd.), lužine (kaustični kalij, kaustična soda, amonijak, soda), soli (kalijev nitrat) , kalijev permanganat, natrijev sulfid, natrijev klorid itd.).

Laboratorijski stol

Za provođenje mikrobioloških istraživanja laborant mora imati odgovarajuće opremljeno radno mjesto. Laboratorijski stol mora imati određenu visinu kako bi ga se lako mikroskopiralo sjedeći za njim (slika 9). Stol po mogućnosti treba prekriti linoleumom, a svako radno mjesto prekriti pocinčanim pladnjem ili staklenim ogledalom. Radno mjesto treba biti opremljeno mikroskopom, stalcima za epruvete i boje, platinastom petljom i iglom za inokulaciju, čašom s mostićem za preparate, podloškom, pješčanim satom, predmetnim i pokrovnim staklima, pipetama, setom boja, filtar papir, alkoholni ili plinski plamenik i staklenku s otopinom za dezinfekciju (lizol, karbolna kiselina, sublimat, kloramin ili lizoform), u koju se za dezinfekciju stavljaju iskorištena predmetna i pokrovna stakalca, pipete, staklene šipke itd. Posuđe u koje uzgojeni mikrobi ne mogu se dezinficirati kemikalijama. Tragovi dezinficijensa na takvom posuđu čine ga naknadno neprikladnim za rast i razmnožavanje mikroorganizama. Posude se nakon upotrebe stavljaju u metalne spremnike ili kante s poklopcem, zatvaraju i steriliziraju u autoklavu. Nakon upotrebe, mali instrumenti (pincete, skalpeli, škare) stavljaju se u sterilizator i kuhaju 30-60 minuta ili se uranjaju u 3-5% sapunsko-karbolnu otopinu kloramina 30-60 minuta.

Riža. 9. Tehnika mikroskopiranja bakterioloških objekata.

Radno mjesto mora biti apsolutno čisto. Neprihvatljivo je da stol bude kontaminiran zaraznim materijalom koji se ispituje (urin, feces, gnoj itd.). U potonjem slučaju, zarazni materijal sa stola može se proširiti na druge okolne predmete i tada je moguća unutarlaboratorijska infekcija. Nakon završenog rada laborant je dužan pospremiti radno mjesto za koje je odgovoran, a radi prevencije staklo na radnom mjestu obrisati komadićem vate navlaženim 5% otopinom karbolne kiseline ili kloramina.

Pravila rada i ponašanja u laboratoriju

Radeći sa zaraznim materijalom, laboratorijski radnici moraju imati na umu mogućnost da se sami zaraze i prenesu zaraznu bolest u svoju obitelj, stan i sl. Stoga moraju biti pažljivi, pažljivi, uredni i pedantni u svom radu.
Pri radu u laboratorijima potrebno je pridržavati se sljedećih pravila:

1. Obavezno je biti u laboratoriju, a još više raditi u njemu, u ogrtaču i marami ili kapici.
2. Ne prelaziti iz jedne laboratorijske prostorije u drugu bez potrebe i koristiti samo predviđeno radno mjesto i opremu.
3. Nemojte jesti niti pušiti u laboratoriju.
4. Pri radu sa zaraznim materijalom i živim kulturama koristiti odgovarajuće alate: pincete, udice, lopatice i druge predmete koji se nakon uporabe moraju uništiti ili učiniti neškodljivima (paljenje na plamenu plamenika, iskuhavanje i sl.). Isisajte tekući infektivni materijal u pipete ne ustima, već uz pomoć balona, ​​žarulja, prelijevajte tekućinu s infektivnim materijalom iz jedne posude u drugu samo preko nekog spremnika (posude, lavora) u koji se stavlja tekućina za dezinfekciju (otopina karbolne kiseline, Lysol) se ulije. . Sjetva i presađivanje provodi se spaljivanjem epruveta, spatula, platinastih petlji, pipeta itd. na plamenu plamenika.
5. Ako se posuđe razbije ili se tekućina koja sadrži zarazni materijal ili žive kulture prolije, odmah temeljito dezinficirajte kontaminirano radno područje, odjeću i ruke. Sve to treba učiniti u prisustvu ili pod nadzorom voditelja laboratorija, koji mora biti odmah obaviješten o nezgodi.
6. Sve korištene i nepotrebne predmete i materijal po mogućnosti uništiti (najbolje ih je spaliti ili temeljito neutralizirati u aparatima za sterilizaciju ili tekućinama za dezinfekciju).

Sve predmete koji se dezinficiraju treba sakupiti unutar laboratorija u posebne spremnike, spremnike, kante s poklopcem i sl. i zatvorene prenijeti u autoklav, gdje će isti dan biti dezinficirani. Dostavljanje infektivnog materijala u autoklav i njegovu sterilizaciju moraju nadzirati posebno imenovani odgovorni laboratorijski radnici.

1. Održavajte strogu čistoću i urednost. Dezinficirajte i perite ruke što češće tijekom radnog dana i nakon završetka rada.
2. Laboratorijski radnici podliježu obveznom cijepljenju protiv težih zaraznih bolesti (prije svega protiv crijevnih bolesti).
3. Obvezna je svakodnevna kvantitativna evidencija svih živih usjeva i zaraženih životinja s unosom u posebne dnevnike i knjigovodstvene knjige.
4. Nakon rada sav materijal i kulture potrebne za daljnji rad ostaviti u zaključanom hladnjaku ili sefu, a radno mjesto dovesti u potpuni red.
5. Svakodnevno temeljito čišćenje laboratorijskih prostorija mora se provoditi mokro s tekućinom za dezinfekciju.